随着发病率不断上升,癌症已成为全球第二大死亡原因。在常见癌症的发病率和死亡率统计中,膀胱癌均位居前列[1]。膀胱癌的传统治疗方式包括化疗、放疗等,但这往往伴随全身性毒副作用。如何降低肿瘤治疗中的毒副作用一直是医学领域的研究热点。其中,光疗具有高时空可控性,是目前最有潜力的抗癌疗法之一。光疗包括光热疗法和光动力疗法(photodynamic therapy,PDT)[2-3]等。
光热疗法所产生的高温会引起蛋白质变性,对细胞造成不可逆的损伤。与正常细胞相比,癌细胞耐高温能力较弱,这使得热处理成为肿瘤治疗的一种途径。早期,单纯激光照射疗法可作为一种肿瘤治疗手段,但其存在损伤正常组织的风险,极大限制了这种疗法在临床上的广泛应用[4]。因此,诱导局部加热的光热治疗成为肿瘤治疗领域的研究热点。光热剂可吸收特定波长的光并将其转换为热能,进而产生光热效应[5]。利用光热剂在肿瘤部位的聚集,可以选择性地在病灶处产生热量,而不会影响癌旁组织。在光波长选择方面,近红外光(near infrared,NIR)因其组织散射较低,可穿透深层组织,且组织中的水及生物分子对NIR的吸收弱,对组织造成的损伤极低,因此成为肿瘤光疗中的首选光源[6-10]。据报道,包括金属纳米粒子、碳纳米材料和黑磷在内的多种纳米材料,因其在NIR波段具有良好的光热效应,且在肿瘤中具备被动靶向性,使其成为优异的光疗候选材料。其中,吲哚菁绿(indocyanine green,ICG)基纳米材料以卓越的光热转换效率,以及优异的近红外光穿透能力,成为光热治疗的热门纳米材料。
PDT通过光照射光敏纳米材料产生活性氧物质(reactive oxygen species,ROS),实现肿瘤治疗。ROS可诱导线粒体氧化应激,并通过凋亡、坏死性凋亡、焦亡等信号通路介导,最终导致肿瘤细胞死亡。Zhang等[11]制备了一种上转换沸石基纳米复合材料,其可在NIR及超声作用下产生大量的ROS,最终导致细胞凋亡。Huang等[12]设计了具有高密度Cu2O支撑的MoS2纳米花,使用NIR操纵纳米药物,在肿瘤部位将过氧化氢(H2O2)快速转化为ROS,有效预削弱了癌细胞的多重抗氧化系统,形成强烈的ROS风暴,最终导致细胞死亡。此外,Peng等[13]使用空心结构框架,与铁和DSPE–PEG2000配位,在808 nm NIR的活化下,通过
本研究成功设计并合成了负载ICG的BiF3介孔纳米球(BFPI),其外观呈深绿色,在NIR波段中具有优异的光热转换效率及ROS生成能力。实验证明:在NIR照射下,BFPI具有高效杀伤肿瘤细胞的能力;通过对比光疗前后肿瘤细胞的形貌,发现BFPI介导的光疗可导致膀胱癌细胞产生明显焦亡。BFPI作为一种新型纳米材料,为膀胱癌的光疗研究提供了一种新的有效策略。
1 实验部分 1.1 载药材料的制备本研究使用介孔BiF3纳米球负载光敏剂ICG,并经PVP修饰,合成一种新型载药纳米材料BFPI。以下为具体的实验材料和合成步骤。
1)实验材料
五水硝酸铋(99.9%)、九水硝酸钠(≥98%)、乙二醇(EG,99%)和聚乙烯吡咯烷酮(PVP K30,分子量45 000~58 000)购自上海化学试剂(中国)。硝酸钠(99.9%)和氟化铵(99.99%)购自安道麦斯(中国)。吲哚菁绿(ICG)购买自MedChemexpress(中国)。甲醇(99%,分析纯)购买自中国医药集团有限公司。所有试剂未经过进一步纯化,纯度均用质量分数表示。
2)BiF3的制备
取1 mmol五水合硝酸铋,2 mmol硝酸钠和400 mg PVP K30置于20 mL 乙二醇中,充分搅拌(500 r/min)1 h,快速加入氟化铵(2 mL,74 mg/mL溶于15 mL 乙二醇溶液),室温搅拌60 s,最后加入35 mL去离子水终止反应。随后,立即洗涤3次,去除杂质。接着,使用去离子水分散BiF3颗粒,4 ℃避光保存。
3)BFPI的制备
取BiF3和ICG(质量比4∶1)分散于甲醇溶液,加入PVP K30(质量为BiF3和ICG总量的4倍)充分搅拌(500 r/min)24 h,再离心(10 000 r/min)10 min,洗涤两次,最后使用去离子水分散纳米颗粒,4 ℃避光保存。
1.2 材料的形貌表征取适量BFPI溶液滴加在铜网上,液滴成半球状,使用加热灯干燥样品。采用透射电子显微镜(transmission electron microscope,TEM)进行BFPI的形貌表征。采用纳米粒径分析仪,进行材料的水合粒径测试。
1.3 材料的性能表征分别测试了BFPI的光热性能和光动力性能。
1)光热性能
使用热成像仪(FLIRE E40,美国)检测BFPI水溶液在808 nm光照射下的光热特性。通过调整照射功率密度(从0.6 W/cm2增至1.2 W/cm2),来监测温度,然后关闭激光器,每次测试5 min。
2)光动力性能
使用1,3–二苯基异苯并呋喃(溶于DMSO)作为指示剂,取0.1 mg/mL的BFPI溶剂3 mL,用照射功率密度为1 W/cm2的激光照射,每隔2 min读取一次材料吸收光谱,共测试10 min。作为对照,采用相同操作,对纯水进行测试。
1.4 细胞培养本文实验对象为小鼠膀胱癌细胞(MB49),使用含10%(体积分数)胎牛血清的DMEM培养基,于37 ℃、CO2(体积分数5%)培养箱中恒温培养。
1.5 细胞摄取实验采用共聚焦小皿培养MB49细胞,在恒温培养箱中放置24 h,分别于实验前2 h、6 h、12 h将DMEM培养基置换为含0.1 mg/mL的BFPI溶液(溶剂为DMEM培养基),利用共聚焦显微镜观察细胞对纳米材料的摄取情况。
1.6 CCK8实验采用96孔板培养MB49细胞,在37 ℃培养箱中放置24 h后,分别加入经DMEM稀释,质量浓度分别为50、100、150、200 μg/mL的BFPI溶液。24 h后,采用酶标仪测量每个孔在450 nm波长处的吸光度(OD值),得到材料的暗毒性。重复上述加样步骤,24 h后,使用照射功率密度为1 W/cm2的激光照射每个孔5 min,再用酶标仪测量每孔的OD值,得到材料的光毒性。
1.7 细胞存活性染色采用共聚焦小皿培养MB49细胞,24 h后,分别加入经DMEM稀释的0.2 mg/mL的BFPI溶液和BiF3溶液,12 h后,使用照射功率密度为1 W/cm2的激光照射MB49细胞10 min。根据是否采用光照,将细胞分为光照和非光照两大组,各大组又细分为空白组、BiF3组和BFPI组。24 h后,各组细胞均与Calcein-AM和PI避光共孵育15 min。随后,用PBS洗涤细胞,并采用共聚焦显微镜监测细胞内荧光(Calcein-AM为绿色,PI为红色)情况。
1.8 DCFH-DA染色采用共聚焦小皿培养MB49细胞,同样将细胞分为光照和非光照两大组,各大组又细分为空白组、BiF3组和BFPI组。光照组采用照射功率密度为1 W/cm2的激光照射10 min后,再与DCFH-DA探针在黑暗中共孵育20 min。PBS洗涤2遍后,采用共聚焦显微镜观察细胞中的荧光(激发光为蓝光,发射光为绿光)情况。
1.9 细胞焦亡形貌表征采用共聚焦小皿培养MB49细胞,24 h后,加入用DMEM稀释的0.2 mg/mL的BFPI溶液,12 h后使用照射功率密度为1 W/cm2的激光照射MB49细胞10 min。30 min后,采用荧光显微镜拍摄明场的细胞形貌。
2 结果与讨论 2.1 BFPI的形态表征载药材料合成后,首先测试其形态表征,图1(a)为载药材料BFPI的TEM图像。可观察到,BFPI纳米材料呈多孔荔枝状,形貌均一,其平均尺寸约为280 nm。图1(b)是BFPI溶液在比色皿中的图像,整体表现为深绿色,无沉淀,分散性良好,表明BFPI的水溶性好。BiF3负载ICG有效改良了ICG的有机溶剂依赖性,无需DMSO等有机溶剂助溶,有效减低了因有机溶剂引入而导致的毒性。图1(c)所示为BFPI的水合粒径表征结果,其平均粒径约为320 nm。该纳米尺寸可使材料滞留在肿瘤内部,从而实现持续给药。由此可见,PVP修饰的介孔BiF3纳米球负载ICG符合实验预期。
|
图 1 BFPI的形态表征图像 Figure 1 Morphological characterization of BFPI |
为了验证BFPI纳米材料的光热性能,首先使用热成像仪对不同功率激光照射后BFPI纳米材料的升温情况进行表征。图2(a)为不同激光功率下,纳米材料在5 min内的升温曲线。可以看到,相同照射时长下,温度随光照功率的增大而升高。当功率密度为1 W/cm2时,BFPI纳米材料从室温25 ℃升高至45 ℃以上,能较好地实现癌细胞杀伤效果。图2(b)是光热性能的热图,结果显示纳米材料表现出优异的光热性能。
|
图 2 BFPI的光热性能表征图 Figure 2 Characterization of photothermal performance of BFPI |
为了验证BFPI的光动力效果,采用1,3–二苯基异苯并呋喃(DPBF)荧光探针探究BFPI的光动力性能。DPBF可以和单线态氧(1O2)结合,过程不可逆,产物的紫外可见吸收峰位于400~450 nm。
图3(a)所示为,BFPI溶液在激光功率密度为1 W/cm2时DPBF的降解情况。在426 nm处,10 min时的OD值较初始数值下降明显,表明BFPI在808 nm波长激发下产生了大量的活性氧。活性氧能破坏肿瘤细胞的蛋白质、脂质和核酸结构,进而导致细胞死亡。图3(b)所示为对照组(水)的DPBF降解曲线,各时间点的OD值无明显下降。综上可知,BFPI的光动力性能优异。
|
图 3 BFPI的光动力性能表征图 Figure 3 Characterization of the photodynamic properties of BFPIs |
为检验负载BFPI能否进入肿瘤细胞并发挥相应效应,借助共聚焦显微镜观察了MB49细胞对BFPI的摄取情况。图4中红色区域所示为BFPI的分布。与明场图像对比可知,MB49细胞对BFPI的吞噬效果良好,与BFPI溶液共孵育2 h后,即可在MB49细胞中检测到BFPI的分布,且该材料能在细胞内稳定存留达12 h。这表明所制备的负载材料BFPI的生物相容性良好,能在细胞内维持稳定性能,且MB49细胞对BFPI的摄取效果显著。
|
图 4 BFPI被MB49细胞摄取情况 Figure 4 Phagocytosis images of BFPI in MB49 cells |
CCK-8试剂盒通过特定反应物的颜色深浅来指示活细胞数量,颜色越深表明活细胞越多。该方法常被用来评估细胞活性,且灵敏度高。图5(a)和(b)展示了不同BFPI浓度下MB49细胞的光毒性和暗毒性情况。在未受激光照射时,MB49细胞存活率维持在80%以上;经808 nm波长光激发后,BFPI能显著杀伤癌细胞,当其质量浓度达到0.2 mg/mL时,MB49细胞的存活率降至25%左右。该结果在一定程度上证实了BFPI借助光热与光动力效果能有效杀伤MB49细胞。为了验证BFPI负载体系的安全性和有效性,检测了其对正常细胞HPAEpiC的暗毒性,结果如图5(c)所示。结果表明,BFPI负载体系能进入非癌细胞HPAEpiC,且细胞存活率高达85%以上。
|
图 5 采用CCK-8试剂盒测试细胞毒性结果 Figure 5 CCK8 cytotoxicity map |
Calcein-AM常与死细胞荧光探针碘化丙啶(PI)联用,可实现活细胞与死细胞的双重荧光染色,用以判断细胞存活性。如图6(a)和(b)所示:未受光照的样本中,红色荧光几乎不可见,而绿色荧光较为明显,反映出BiF3和BFPI等纳米材料具有优良的生物安全性;在光照条件下,光照组与BiF3组细胞维持良好生存状态,主要呈现绿色荧光,而BFPI组红色荧光最强,表明该组有大量细胞死亡。该实验结果有力证实了,经808 nm激光激发的BFPI材料能够高效杀伤膀胱癌细胞,该结果与采用CCK-8试剂盒检测所得结果一致。
|
图 6 细胞存活情况染色图 Figure 6 Staining of dead and alive cells |
为了在细胞层面验证纳米材料BFPI生成ROS的能力,采用DCFH-DA纳米探针来探究不同组别MB49细胞内部ROS的水平。DCFH-DA无荧光,可穿过细胞膜,在细胞内被酯酶水解为DCFH。细胞内有ROS存在时,DCFH被氧化为强荧光的DCF,且荧光强度与ROS水平正相关,从而可间接测量细胞内ROS的产生量。
图7(a)和(b)所示为MB49细胞摄取BFPI后,在非光照和光照条件下不同组别的ROS产生情况。非光照组的绿色荧光较弱,表明几乎没有ROS的产生。而光照组中,Control组和BiF3组实验结果与非光照组一致,但BFPI组的荧光亮度远高于其他两组,表明该组产生了较多ROS。由此说明,BFPI具备出色的ROS生成能力。
|
图 7 ROS的表征结果 Figure 7 ROS characterization |
借助荧光显微镜的明场观察法,评估了BFPI介导的光疗诱导MB49细胞死亡的方式。如图8(a)所示,在明场中可观察到MB49细胞在形态上出现显著变化,包括细胞肿胀、细胞坍塌破裂以及呈气球样变等现象,与细胞经典的焦亡形貌一致。测量不同处理条件下MB49细胞培养上清液中IL-1β的含量,结果见图8(b)。BFPI+光照组的IL-1β表达量相对其他组较高,说明BFPI+光照组的处理方式能够导致炎性因子IL-1β的成熟与分泌,诱导MB49细胞焦亡。综上所述,经808 nm激光照射,BFPI能够有效诱导MB49细胞发生焦亡。
|
图 8 MB49焦亡表征结果 Figure 8 MB49 characterization chart of pyroptosis |
本研究以传统光敏剂ICG为基础,借助介孔BiF3纳米球负载,成功解决了ICG对有机溶剂的依赖问题,使负载体系在水环境中均匀分布。光热与光动力性能测试表明,该纳米体系具备出色的光热效能及活性氧生成能力。细胞摄取实验证实了BFPI在MB49细胞内具有良好的生物相容性和细胞稳定性。CCK-8试剂盒、Calcein-AM及PI细胞染色结果显示,在808 nm波长激发下,BFPI对MB49细胞展现出较强的杀伤力。利用荧光显微镜观察发现,MB49细胞膜出现肿胀、气球样变等焦亡特征,表明BFPI能在近红外区域有效诱导膀胱癌细胞焦亡。该研究成果表明,BFP能在短时间内发挥效用,显著杀伤MB49细胞,有望在膀胱癌治疗领域发挥重要作用。
| [1] | LI R, SUNDI D, ZHANG J S, et al. Systematic review of the therapeutic efficacy of bladder-preserving treatments for non–muscle-invasive bladder cancer following intravesical Bacillus Calmette-Guérin[J]. European Urology, 2020, 78(3): 387–399. DOI:10.1016/j.eururo.2020.02.012 |
| [2] | CHEN J Q, NING C Y, ZHOU Z N, et al. Nanomaterials as photothermal therapeutic agents[J]. Progress in Materials Science, 2019, 99: 1–26. DOI:10.1016/j.pmatsci.2018.07.005 |
| [3] | LIU Y Y, MENG X F, BU W B. Upconversion-based photodynamic cancer therapy[J]. Coordination Chemistry Reviews, 2019, 379: 82–98. DOI:10.1016/j.ccr.2017.09.006 |
| [4] | MASTERS A, BOWN S G. Interstitial laser hyperthermia in the treatment of tumours[J]. Lasers in Medical Science, 1990, 5(2): 129–136. DOI:10.1007/BF02031374 |
| [5] | ZHENG R, WANG S, TIAN Y, et al. Polydopamine-coated magnetic composite particles with an enhanced photothermal effect[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2015, 7(29): 15876–15884. DOI:10.1021/acsami.5b03201 |
| [6] | GUO S, GU D Y, YANG Y, et al. Near-infrared photodynamic and photothermal co-therapy based on organic small molecular dyes[J]. Journal of Nanobiotechnology, 2023, 21(1): 348. DOI:10.1186/s12951-023-02111-x |
| [7] | WANG X M, PAN S S, CHEN L, et al. Biogenic copper selenide nanoparticles for near-infrared photothermal therapy application[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2023, 15(23): 27638–27646. DOI:10.1021/acsami.3c03611 |
| [8] | KONG B, LIU R, SHAN J Y, et al. Frozen reinforced microneedles loaded with NIR-photothermal nanozyme for keratitis treatment[J]. Nano Today, 2023, 52: 102000. DOI:10.1016/j.nantod.2023.102000 |
| [9] | 郑科杰, 郑璐璐. 光激活膀胱癌焦亡的新型药物的研究[J]. 光学仪器, 2024, 46(1): 15–22. DOI:10.3969/j.issn.1005-5630.202302280032 |
| [10] | LI H Q, ZOU X L, CHEN H J, et al. Diradicaloid strategy for high-efficiency photothermal conversion and high-sensitivity detection of near infrared light[J]. Advanced Optical Materials, 2023, 11(14): 2300060. DOI:10.1002/adom.202300060 |
| [11] | ZHENG L L, ZHANG Y L, LIN H, et al. Ultrasound and near-infrared light dual-triggered upconversion zeolite-based nanocomposite for hyperthermia-enhanced multimodal melanoma therapy via a precise apoptotic mechanism[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2020, 12(29): 32420–32431. DOI:10.1021/acsami.0c07297 |
| [12] | HUANG J, DENG G M, WANG S Y, et al. A NIR-II photoactivatable “ROS Bomb” with high-density Cu2O-supported MoS2 nanoflowers for anticancer therapy[J]. Advanced Science, 2023, 10(24): 2302208. |
| [13] | PENG H, JIANG Q, MAO W H, et al. Fe-HCOF-PEG2000 as a hypoxia-tolerant photosensitizer to trigger ferroptosis and enhance ROS-based cancer therapy[J]. International Journal of Nanomedicine, 2024, 19: 10165–10183. DOI:10.2147/IJN.S479848 |
| [14] | XIA W L, RAN X Y, XIE K P, et al. Optimized indocyanine green nanopreparations for biomedical applications[J]. Coordination Chemistry Reviews, 2025, 528: 216422. DOI:10.1016/j.ccr.2024.216422 |
| [15] | YANG Z J, DU J, CHEN M Y, et al. Light-triggered bismuth-based nanosphere as a dual-inductive nanomedicine for antitumor immunotherapy[J]. ACS Applied Nano Materials, 2025, 8(2): 1021–1032. DOI:10.1021/acsanm.4c05711 |
| [16] | MENG X F, YI Y, MENG Y, et al. Self-enhanced acoustic impedance difference strategy for detecting the acidic tumor microenvironment[J]. ACS Nano, 2022, 16(3): 4217–4227. DOI:10.1021/acsnano.1c10173 |
2026, Vol. 48
Issue (2): 9-16


